Химическая и биологическая безопасность

21.ХБ.143. Методы повышения выделения в культурах Francisella tularensis. Methods for enhanced culture recovery of Francisella tularensis. Petersen J.M., Schriefer M.E., Gage K.L., Montenieri J.A., Carter L.G., Stanley M., Chu M.C. Appl. and Environ. Microbiol. 2004. 70, № 6, с. 3733–3735. Англ.

21.ХБ.144. Диагностические критерии во время вспышки тяжелого острого респираторного синдрома в Гонконге. Diagnostic criteria during SARS outbreak in Hong Kong. Chan L.Y., Lee N., Chan P.K.S., Wu A., Rainer T.H., et al. Emerg. Infec. Diseases. 2004. 10, № 6, с. 1168–1170. Англ.

21.ХБ.145.Мелиоидоз в Маврикии. Melioidosis in Mauritius. Issack M.I., Bundhun C.D., Gokhool H. Emerg. Infec. Diseases. 2005. 11, № 1, с. 139–140. Англ.

21.ХБ.146.Подавление никлозамидом репликации коронавируса, вызывающего тяжелый острый респираторный синдром. Inhibition of severe acute respiratory syndrome coronavirus replication by niclosamide. Wu C.J., Jan J.T., Chen C.M., Hsieh H.P., Hwang D.R., Liu H.W., et al. Antimicrob. Agents and Chemother. 2004. 48, № 7, с. 2693–2696. Англ.

21.ХБ.147.Влияние сортов яблок на инактивацию различных штаммов Escherichia coli 0157:H7 в яблочном соке УФ-облучением. Influence of apple cultivars on inactivation of different strains of Escherichia coli 0157:H7 in apple cider by UV irradiation. Basaran N., et al. Appl. and Environ. Microbiol. 2004. 70, № 10, с. 6061–6065. Англ.

21.ХБ.148.Выживаемость Shewanella oneidensis MR-1 после экспонирования к УФ-облучению. Survival of Shewanella oneidensis MR-1 after UV radiation exposure. Qiu X., Sundin Y.W., Chai B., Tiedje J.M. Appl. and Environ. Microbiol. 2004. 70, № 11, с. 6435–6443. Англ.

21.ХБ.149.Внутриклеточное размножение Legionella pneumophila в Hartmannela vermiformis, содержащихся в водных биопленках, растущих на поверхности пластифицированного поливинилхлорида. Intracellular proliferation of Legionella pneumophila in Hartmannella vermiformis in aquatic biofilms grown on plasticized polyvinil chloride. Kuiper M.W., Wullings B.A., Akkermans A.D., Beumer R.R., van der Kooij D. Appl. and Environ. Microbiol. 2004. 70, № 11, с. 6826–6833. Англ.

21.ХБ.150.*Холерный токсин индуцирует экспрессию ионных каналов и переносчиков в тонкой кишке крыс. Cholera toxin induces expression of ion channels and carriers in rat small intestinal mucosa. Flach Carl-Fredrik, Lange Stefan, Jennische Eva, Lonnroth Ivar FEBS Lett. 2004. 561, № 1–3, с. 122–126. Англ.

21.ХБ.151.Разные реакции макрофагов на гладкие и шероховатые виды бруцелл: связь с вирулентностью. Different responses of macrophages to smooth and rough Brucella spp.: relationship to virulence. Jimenez de Bagues M.P., Terraza A., Gross A., Dornand J. Infec. and Immun. 2004. 72, № 4, с. 2429–2433. Англ.

21.ХБ.152.Двунаправленное введение аэрозолей через нос может препятствовать осаждению в легких. Bi-directional nasal delivery of aerosols can prevent lung deposition. Djupesland P.G., Skretting A., Winderen M., Holand T. J. Aerosol Med. 2004. 17, № 3, с. 249–259. Англ.

21.ХБ.153.Динамические образцы субклеточной локализации белка во время морфогенеза споровой оболочки у Bacillus subtilis. Dynamic patterns of subcellular protein localization during spore coat morphogenesis in Bacillus subtilis. Van Ooij C., Eichenberger P., Losick R. J. Bacteriol. 2004. 186, № 14, с. 4441–4448. Англ.

21.ХБ.154.Сравнительная гибридизация полных геномов бруцелл выявляет наличие в них геномных островков. Comparative whole-genome hybridization reveal genomic islands in Brucella species. Rajashekara G., Glasner J.D., Glover D.A., Splitter G.A. J. Bacteriol. 2004. 186, № 15, с. 5040–5051. Англ.

21.ХБ.155.Частота полиморфных мутаций у Escherichia coli: появление слабых мутаторов у клинических изолятов. Polymorphic mutation frequencies in Escherichia coli: emergence of weak mutators in clinical isolates. Baquero M.R., Nilsson A.I., del Carmen Turrientes M., et al. J. Bacteriol. 2004. 186, № 16, с. 5538–5542. Англ.

21.ХБ.156.Полная геномная последовательность Rickettsia typhi в сравнении с последовательностями других риккетсий. Complete genome sequence of Rickettsia typhi and comparison with sequences of other Rickettsiae. McLeod M.P., Qin X., Karpathy S.E., Gioia J., Highlander S.K., Fox G.E., McNeill T.Z., Jiang H., et al. J. Bacteriol. 2004. 186, № 17, с. 5842–5855. Англ.

21.ХБ.157.Изучение геновариантов Salmonella enterica подвида I с использованием метода микропорядков. Characterization of Salmonella enterica subspecies I genovars by use of microarrays. Porwollik S., Boyd E.E., Choy C., Cheng P., et al. J. Bacteriol. 2004. 186, № 17, с. 5883–5898. Англ.

21.ХБ.158.Гены денитрификации регулируют вирулентность бруцелл у мышей. Denitrification genes regulate Brucella virulence in mice. Baek S.-H., Rajashekara G., Splitter G.A., Shapleigh J.P. J. Bacteriol. 2004. 186, № 18, с. 6025–6031. Англ.

21.ХБ.159.Повторный элемент ДНК bcr1 является специфичным для группы Bacillus cereus и обнаруживает характеристики подвижного элемента. The bcr1 DNA repeat element is specific to the Bacillus cereus group and exhibits mobile element characteristics. Okstad O.A., Tourasse N.J., Stabell F.B., Sundfaer C.K., et al. J. Bacteriol. 2004. 186, № 22, с. 7714–7725. Англ.

21.ХБ.160.Основанный на одной молекуле метод сравнения бактериальных геномов посредством оптического картирования. Single-molecule approach to bacterial genomic comparisons via optical mapping. Zhou S., Kile A., Bechner M., Place M., Kvikstad E., Deng W., Wei J., et al. J. Bacteriol. 2004. 186, № 22, с. 7773–7782. Англ.

21.ХБ.161.Популяционная структура и эволюция группы Bacillus cereus. Population structure and evolution of the Bacillus cereus group. Priest F.G., Barker M., Baillie L.W.J., Holmes E.C., Maiden M.C.J. J. Bacteriol. 2004. 186, № 22, с. 7959–7970. Англ.

21.ХБ.162.Обнаружение новых генов споруляции у Bacillus subtilis. Unmasking novel sporulation genes in Bacillus subtilis. Silvaggi J.M., Popham D.L., Driks A., Eichenberger P., Losick R. J. Bacteriol. 2004. 186, № 22, с. 8089–8095. Англ.

21.ХБ.163.*Ингибирование и перераспределение NHE3, апикального обменника Na⁺/H⁺, вызванные токсином B Clostridium difficile. Inhibiton and redistribution of NHE3, the apical Na⁺/H⁺ exchanger by Clostridium difficile toxin B. Hayashi Hisayoshi, Szaszi Katalin, Coady-Osberg Natasha, Furuya Wendy, Bretscher Anthony P., Orlowski John, Grinstein Sergio J. Gen. Physiol. 2004. 123, № 5, с. 491–504. Англ.

21.ХБ.164.Последовательная модификация фактора инициации трансляции eIF4GI двумя протеазами вируса ящура в инфицированных клетках почки новорожденного хомяка: идентификация сайта расщепления 3Cpro. Sequential modification of translation initiation factor eIF4GI by two different foot-and-mouth disease virus proteases within infected baby hamster kidney cells: identification of the 3Cpro cleavage site. Strong R., Belsham G.J. J. Gen. Virol. 2004. 85, № 10, с. 2953–2962. Англ.

21.ХБ.165.Влияние пола на инфекцию Coxiella burnetii: защитная роль 17 бета-эстрадиола. Effect of sex on Coxiella burnetii infection: protective role of 17 beta-estradiol. Leone M., Honstettre A., Lepidi H., Capo C., Bayard F., Raoult D., Mege J.L. J. Infec. Diseases. 2004. 189, № 2, с. 339–345. Англ.

21.ХБ.166.Индуцирование вирусом Западного Нила молекул главного комплекса гистосовместимости класса I: участие в этом процессе двух сигнальных механизмов. Major histocompatibility complex class I (МНС-I) induction by West Nile virus: involvement of 2 signaling pathways in МНС-I up-regulation. Cheng Y., King N.J., Kesson A.M. J. Infec. Diseases. 2004. 189, № 4, с. 658–668. Англ.

21.ХБ.167.Экспериментальное инфицирование макак-резус вирусом Западного Нила. Уровень и продолжительность вирусемии и динамика реакции антителообразования после заражения. Experimental infection of rhesus macaques with West Nile virus: level and duration of viremia and kinetics of the antibody response after infection. Ratterree M.S., Gutierrez R.A., Travassos da Rosa A.P., Dille B.J., Bedsley D.W., Bohm R.P., Desai S.M., et al. J. Infec. Diseases. 2004. 189, № 4, с. 669–676. Англ.

21.ХБ.168.Ослабление Th1-функции специфичных к неструктурному белку 3 Т-клеток у японских больных энцефалитом с неврологическими последствиями. Impaired T helper 1 function of nonstructural protein 3-specific T cells in Japanese patients with encephalitis with neurological sequelae. Kumar P., Sulochana P., Nirmala G., Chandrashekar R., Haridattatreya M., Satchidanandam V. J. Infec. Diseases. 2004. 189, № 5, с. 880–891. Англ.

21.ХБ.169.Аэрозольное инфицирование макак циномолгус энзоотическими штаммами вируса венесуэльского энцефалита лошадей. Aerosol infection of cynomolgus macaques with enzootic strains of Venezuelan equine encephalitis viruses. Reed D.S., Lind C.M., Sullivan L.J., Pratt W.D., Parker M.D. J. Infec. Diseases. 2004. 189, № 6, с. 1013–1017. Англ.

21.ХБ.170.Временная конфокальная микроскопия Bacillus anthracis в макрофагах. Time-lapse confocal imaging of development of Bacillus anthracis in macrophages. Ruthel G., Ribot W.J., Bavari S., Hoover T.A. J. Infec. Diseases. 2004. 189, № 7, с. 1313–1316. Англ.

21.ХБ.171.Определение местонахождения вируса денге в тканях естественно инфицированных людей при помощи иммуногистохимических методов и метода гибридизации in situ. Localization of dengue virus in naturally infected human tissues by immunohistochemistry and in situ hybridization. Jessie K., Fong M.Y., Devi S., Lam S.K., Wong K.T. J. Infec. Diseases. 2004. 189, № 8, с. 1411–1418. Англ.

21.ХБ.172.Высокая точность РНК-полимеразы вируса желтой лихорадки. High fidelity of yellow fever virus RNA polymerase. Pugachev K.V., Guirakhoo F., Ocran S.W., Mitchell F., Parsons M., Penal C., Girakhoo S., et al. J. Virol. 2004. 78, № 2, с. 1032–1038. Англ.

21.ХБ.173.Продуцирование с кДНК новых частиц, подобных вирусу Эбола. Альтернатива получению вируса Эбола посредством обратной генетики. Production of novel Ebola virus-like particles from cDNA: an alternative to Ebola virus generation by reverse genetics. Watanabe S., Watanabe T., Noda T., Takada A., Feldmann H., Jasenosky L.D., Kawaoka Y. J. Virol. 2004. 78, № 2, с. 999–1005. Англ.

21.ХБ.174.Синтез РНК вируса Буньямвера требует кооперации 3‘- и 5‘-концевых последовательностей. Bunyamwera bunyavirus RNA synthesis requires cooperation of 3‘- and 5‘-terminal sequences. Barr J.N., Wertz G.W. J. Virol. 2004. 78, № 3, с. 1129–1138. Англ.

21.ХБ.175.Распределение гидрофобных остатков имеет решающее значение для фузогенных свойств пептида слияния GP2 вируса Эбола. Distribution of hydrophobic residues is crucial for the fusogenic properties of the Ebola virus GP2 fusion peptide. Adam B., Lins L., Stroobant V., Thomas A., Brasseur R. J. Virol. 2004. 78, № 4, с. 2131–2136. Англ.

21.ХБ.176.Изменения в расщеплении рrM и экспорт химерных вирусов денге с рrM-соединением. Alterations of pr-M cleavage and virus export in pr-M junction chimeric dengue viruses. Keelapang P., Sriburi R., Supasa S., Panyadеe N., Songjaeng A., Jairungsri A., et al. J. Virol. 2004. 78, № 5, с. 2367–2381. Англ.

21.ХБ.177.Матричный белок вируса Марбург транспортируется к плазматической мембране вдоль клеточных мембран: использование ретроградного позднего эндосомного механизма. The matrix protein of Marburg virus is transported to the plasma membrane along cellular membranes: exploiting the retrograde late endosomal pathway. Kolesnikova L., Bamberg S., Berghofer B., Becker S. J. Virol. 2004. 78, № 5, с. 2382–2393. Англ.

21.ХБ.178.Роль образования дисульфидных мостов в экспрессии эпитопов оболочечного гликопротеида вируса денге типа 2. Contribution of disulfide bridging to epitope expression of the dengue type 2 virus envelope glycoprotein. Roehrig J.T., Volpe K.E., Squires J., Hunt A.R., Davis B.S., Chang G.J. J. Virol. 2004. 78, № 5, с. 2648–2652. Англ.

21.ХБ.179.Клетки, экспрессирующие RING-фингерный белок Z, являются устойчивыми к аренавирусной инфекции. Cells expressing the RING finger Z protein are resistant to arenavirus infection. Cornu T.I., Feldmann H., de la Torre J.C. J. Virol. 2004. 78, № 6, с. 2979–2983. Англ.

21.ХБ.180.Подавление разных штаммов вируса Ласса альфа- и гамма-интерферонами в сравнении с менее патогенным аренавирусом. Inhibition of different Lassa virus strains by alpha and gamma interferons and comparison with a less pathogenic arenavirus. Asper M., Sternsdorf T., Hass M., Drosten C., Rhode A., Schmitz H., Gunther S. J. Virol. 2004. 78, № 6, с. 3162–3169. Англ.

21.ХБ.181.Участие RpoS и RpoN в зависимой от роста регуляции транскрипции rfaH и экспрессии О-антигена у Salmonella enterica серовара Typhi. RpoS and RpoN are involved in the growth-dependent regulation of rfaH transcription and O antigen expression in Salmonella enterica serovar Typhi. Bittner M., Saldias S., Altamirano F., Valvano M.A., Contreras I. Microb. Pathog. 2004. 36, № 1, с. 19–24. Англ.

21.ХБ.182.Различия в транспортировке и способности утилизировать связанную с серотипом плазмиду вирулентности у штаммов Salmonella enterica серотипа Typhimurium, изученные с использованием самопереносимой плазмиды вирулентности p0G669. Differences in the carriage and the ability to utilize the serotype associated virulence plasmid in strains of Salmonella enterica serotype Typhimurium investigated by use of a self-transferable virulence plasmid, p0G669. Olsen J.E., Brown D.J., Thomsen L.E., Platt D.J., Chadfield M.S. Microb. Pathog. 2004. 36, № 6, с. 337–347. Англ.

21.ХБ.183.Экспрессирование генов во время нагревания Salmonella typhimurium: гены, специфичные для роста на поверхности, и предполагаемые новые гены подвижности и патогенности. Gene expression patterns during swarming in Salmonella typhimurium: genes specific to surface growth and putative new motility and pathogenicity genes. Wang Q., Frye J.G., McClelland M., Harshey R.M. Mol. Microbiol. 2004. 52, № 1, с. 169–187. Англ.

21.ХБ.184.Межклеточная передача сигналов у Escherichia coli и Salmonella enterica. Cell-to-cell signalling in Escherichia coli and Salmonella enterica. Ahmer B.M. Mol. Microbiol. 2004. 52, № 4, с. 933–945. Англ.

21.ХБ.185.SepL, белок, необходимый для транслокации типа III энтеропатогенной Escherichia coli, взаимодействует с компонентом секреции SepD. SepL, а protein required for enteropathogenic Escherichia coli type III translocation, interacts with secretion component SepD. O‘Connell C.B., Creasey E.A., Knutton S., Elliott S., Growther L.J., et al. Mol. Microbiol. 2004. 52, № 6, с. 1613–1625. Англ.

21.ХБ.186.Бактериальная сигнальная молекула ppGpp контролирует экспрессию гена вирулентности сальмонелл. The bacterial signal molecule, ppGpp, regulates Salmonella virulence gene expression. Pizarro-Cerda J., Tedin K. Mol. Microbiol. 2004. 52, № 6, с. 1827–1844. Англ.

21.ХБ.187.Дифференцировать, чтобы размножаться: уроки из жизненного цикла Legionella pneumophila. Differentiate to thrive: lessons from the Legionella pneumophila life cycle. Molofski A.B., Swanson M.S. Mol. Microbiol. 2004. 53, № 1, с. 29–40. Англ.

21.ХБ.188.Влияние профагов на бактериальные хромосомы. The impact of prophages on bacterial chromosomes. Canchaya C., Fournous G., Brussow H. Mol. Microbiol. 2004. 53, № 1, с. 9–18. Англ.

21.ХБ.189.Активация глобального регулятора CodY Bacillus subtilis при прямом взаимодействии с аминокислотами, имеющими разветвленную цепь. Activation of the Bacillus subtilis global regulator CodY by direct interaction with branched-chain amino acids. Shivers R.P., Sonenshein A.L. Mol. Microbiol. 2004. 53, № 2, с. 599–611. Англ.

21.ХБ.190.Для вирулентности сальмонелл требуется подавление фосфорилирования RcsC-YojM-RcsB белком IgaA. Repression of the RcsC-YojM-RcsB phosphorelay by the IgaA protein, is a requisite for Salmonella virulence. Dominguez-Bernal G., Pucciarelli M.G., Ramos-Morales F., Garcia-Quintanilla M., et al. Mol. Microbiol. 2004. 53, № 5, с. 1437–1449. Англ.

21.ХБ.191.Функциональные домены IS1-транспозазы: анализ in vivo и in vitro. Functional domains of the IS1 transposase: analysis in vivo and in vitro. Ton-Hoang B., Turlan C., Chandler M. Mol. Microbiol. 2004. 53, № 5, с. 1529–1543. Англ.

21.ХБ.192.Субклеточные сайты экспорта бактериального белка. Subcellular sites for bacterial protein export. Campo N., Tjalsma H., Buist G., Stepniak D., Meijer M., et al. Mol. Microbiol. 2004. 53, № 6, с. 1583–1599. Англ.

21.ХБ.193.Идентификация генных регуляторных элементов путем обнаружения по всему геному сайтов гиперчувствительности к ДНКазе. Identifying gene regulatory elements by genome-wide recovery of DNase 992 hypersensitive sites. Crawford G.E., Holt I.E., Mullikin J.C., Tai D., Green E.D., et al. Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 2004. 101, № 4, с. 997. Англ.

21.ХБ.194.Лудильщик, портной: сможет ли Вентер сшить новый геном?. Tinker, tailor: can Venter stitch together a genome from scratch?. Zimmer C. Science. 2004. 299, № 5609, с. 1006–1007. Англ.

21.ХБ.195.Идентификация эпитопов мышиных Т-клеток у нуклеопротеида вируса Эбола. Identification of murine T-cell epitopes in Ebola virus nucleoprotein. Simmons G., Lee A., Rennekamp A.J., Fan X., Bates P., Shen H. Virology. 2004. 318, № 1, с. 224–230. Англ.

21.ХБ.196.Ранняя активация естественных киллеров и В-клеток в реакции на первичную инфекцию вируса денге у мышей A/J. Early activation of natural killer and B cells in response to primary dengue virus infection in A/J mice. Shresta S., Kyle J.L., Beatty P. Robert, Harris E. Virology. 2004. 319, № 2, с. 262–273. Англ.

21.ХБ.197.Эндотелиальные клетки бычьей аорты являются чувствительными к инфекции вируса Хантаан. Bovine aortic endothelial cells are susceptible to Hantaan virus infection. Bahr U., Muranyi W., Muller S., Kehm R., Handermann M., Darai G., Zeier M. Virology. 2004. 321, № 1, с. 1–7. Англ.

21.ХБ.198.Аренавирусы Старого и Нового Света имеют в домене слияния гликопротеида 2 высококонсервативный эпитоп, узнаваемый специфичными к вирусу Ласса клонами человеческих Т-клеток CD4⁺. Old and New World arenaviruses share a highly conserved epitope in the fusion domain of the glycoprotein 2, which is recognized by Lassa virus-specific human CD4⁺ T-cell clones. Meulen J., Badusche M., Satoguina J., Strecker T., Lenz O., et al. Virology. 2004. 321, № 1, с. 134–143. Англ.

21.ХБ.199.Определение последовательности L-сегмента вируса Конго-Крымской геморрагической лихорадки. Sequence determination of the Crimean-Congo hemorrahagic fever virus L segment. Kinsella E., Martin S.G., Grolla A., Czub M., Feldmann H., Flick R. Virology. 2004. 321, № 1, с. 23–28. Англ.

21.ХБ.200.L-Сегмент РНК-генома вируса Конго-Крымской геморрагической лихорадки и кодируемый им белок. Crimean-Congo hemorrhagic fever virus genome L RNA segment and encoded protein. Honig J.E., Osborne J.C., Nichol S.T. Virology. 2004. 321, № 1, с. 29–35. Англ.

21.ХБ.201.Опосредованный гликопротеидом вируса Эбола аноикис первичных эндотелиальных клеток капилляров человеческого сердца. Ebola virus glycoprotein-mediated anoikis of primary human cardiac microvascular еndothelial cells. Ray R.B., Basu A., Steele R., Beyene A., McHowat J., Meyer K., Ghosh A.K., Ray R. Virology. 2004. 321, № 2, с. 181–188. Англ.

21.ХБ.202.Новая модель персистенции вируса Хантаан у мышей: равновесие между вирусной инфекцией и реакциями Т-клеток CD8⁺. A new model of Hantaan virus persistence in mice: the balance between HTNV infection and CD8⁺ T-cell responses. Araki K., Yoshimatsu K., Lee B.H., Kariwa H., Takashima I., Arikawa J. Virology. 2004. 322, № 2, с. 318–327. Англ.

21.ХБ.203.Филогеография и молекулярная эволюция вируса денге-2 в Карибском бассейне в период с 1981 по 2000 гг.. Phylogeography and molecular evolution of dengue 2 in the Caribbean basin, 1981–2000. Foster J.E., Bennett S.N., Carrington C.V., Vaughan H., McMillan W.O. Virology. 2004. 324, № 1, с. 48–59. Англ.

21.ХБ.204.Подавление PKR вирусом вакцины: роль N- и С-концевых доменов E3L. Inhibition of PKR by vaccinia virus: role of the N- and C-terminal domains of E3L. Langland J.O., Jacobs B.L. Virology. 2004. 324, № 2, с. 419–429. Англ.

21.ХБ.205.Анализ полного генома и молекулярная характеристика вируса Исуту, появившегося в Австрии в 2001 г.: сравнение с южноафриканским штаммом SAAR-1776 и другими флавивирусами. Complete genome analysis and molecular characterization of Usutu virus that emerged in Austria in 2001: comparison with the South African strain SAAR-1776 and other flaviviruses. Bakonyi T., Gould E.A., Kolodziejek J., Weissenbock H., Nowotny N. Virology. 2004. 328, № 2, с. 301–310. Англ.

21.ХБ.206.Вирусы с двунитевой РНК. The dsRNA viruses. Mertens P. Virus Res. 2004. 101, № 1, с. 3–13. Англ.

21.ХБ.207.Секвенирование полного генома вируса денге типа 1, выделенного в Буэнос-Айресе, Аргентина. Complete genome sequencing of dengue virus type 1 isolated in Buenos Aires, Argentina. Barrero P.R., Mistchenko A.S. Virus Res. 2004. 101, № 2, с. 135–145. Англ.

21.ХБ.208.Контролирование репликации вирусов с несегментированной отрицательно-смысловой РНК siPHK. Control of nonsegmented negative-strand RNA virus replication by siRNA. Barik S. Virus Res. 2004. 102, № 1, с. 27–35. Англ.

21.ХБ.209.Изучение взаимодействий между нуклеокапсидным и мембранным белками коронавируса ТОРС. Characterization of protein-protein interactions between the nucleocapsid protein and membrane protein of the SARS coronavirus. He R., Leeson A., Ballantine M., Andonov A., Baker L., et al. Virus Res. 2004. 105, № 2, с. 121–125. Англ.

21.ХБ.210.Лабораторное подтверждение случая ТОРС на юге Китая. Laboratory confirmation of a SARS case, southern China. Weekly Epidemiol. Rec./WHO. 2004. 79, № 1–2, с. 1–2. Англ.

21.ХБ.211.Вирус Нипах. Nipah virus. Weekly Epidemiol. Rec./WHO. 2004. 79, № 9, с. 86–88. Англ.

Наверх
<<Назад	<<Содержание>>	Далее>>