Химическая и биологическая безопасность

6.ХБ.100. Функциональное изучение ОХА-57, бета-лактамазы класса D Burkholderia pseudomallei. Functional characterization of OXA-57, a class D beta-lactamase from Burkholderia pseudomallei. Keith K.E., Oyston P.C., Crossett B., Fairweather N.F., Titball R.W., Walsh T.R., Brown K.A. Antimicrob. Agents and Chemother. 2005. 49, № 4, с. 1639–1641. Англ.

6.ХБ.101. Идентификация и изучение мощного низкомолекулярного ингибитора аренавирусов Нового Света, вызывающих геморрагические лихорадки. Identification and characterization of potent small molecule inhibitor of hemorrhagic fever New World arenaviruses. Bolken T.C., Laquerre S., Zhang Y., Bailey T.R., Pevear D.C., et al. Antiviral Res. 2006. 69, № 2, с. 86–97. Англ.

6.ХБ.102.Характеристика штамма вируса осповакцины, использованного между 1937 и 1970 годами в Аргентине для производства вакцины против натуральной оспы. Characterization of a vaccinia virus stain used to produce smallpox vaccine in Argentina between 1937 and 1970. Lewis A., Bok K., Perez O., de Fillippo J., Paolazzi C., Gomez J.A. Arch. Virol. 2005. 150, № 7, с. 1485–1491. Англ.

6.ХБ.103.Молекулярные механизмы патогенеза вируса Западного Нила в клетках мозга. Molecular mechanisms of West Nile virus pathogenesis in brain cell. Koh W.L., Ng M.L. Emerg. Infec. Diseases. 2005. 11, № 4, с. 629–632. Англ.

6.ХБ.104.Серологические анализы для обнаружения у людей инфекций хантавируса Анды, основанные на экспрессированном в дрожжах его нуклеокапсидном белке. Serological assays for the detection of human Andes hantavirus infections based on its yeast-expressed nucleocapsid protein. Schmidt J., Meisel H., Capria S.G., Petraityte R., Lundkvist A., et al. Intervirology. 2006. 49, № 3, с. 173–184. Англ.

6.ХБ.105.Протеомное изучение вирулентности Yersinia pestis. Proteomic characterization of Yersinia pestis virulence. Chromy B.A., Choi M.W., Murphy G.A., Gonzales A.D., Corzett C.H., et al. J. Bacteriol. 2005. 187, № 23, с. 8172–8180. Англ.

6.ХБ.106.Две клады вирусов оспы обезьян. A tale of two clades: monkeypox viruses. Likos A.M., Sammons S.A., Olson V.A., Frace A.M., Li Y., Olsen-Rasmussen M., Davidson W., et al. J. Gen. Virol. 2005. 86, ч. 10, с. 2661–2672. Англ.

6.ХБ.107.В отсутствии белка А36R внутриклеточные оболочечные вирионы вируса вакцины движутся к периферии клеток на микротрубочках. Vaccinia virus intracellular enveloped virions move to the cell periphery on microtubules in the absence of the А36R protein. Herrero-Martinez E., Roberts K.L., Hollinshead M., Smith G.L. J. Gen. Virol. 2005. 86, ч. 11, с. 2961–2968. Англ.

6.ХБ.108.Вирусоподобные частицы, производные от вируса леса Семлики: изучение их продуцирования и механизмов трансдукции. Semliki Forest virus-derived virus-like particles: characterization of their production and transduction pathways. Diatta A., Piver E., Collin C., Vaudin P., Pages J.C. J. Gen. Virol. 2005. 86, ч. 11, с. 3129–3136. Англ.

6.ХБ.109.Изучение у вируса японского энцефалита мутации Е-138 (Глу/Лиз) с использованием стабильного полной длины инфекционного клона кДНК. Characterization of the E-138 (Glu/Lys) mutation in Japanese encephalitis virus by using a stable, full-length, infectious cDNA clone. Zhao Z., Date T., Li Y., Kato T., Miyamoto M., Yasui K., Wakita T. J. Gen. Virol. 2005. 86, ч. 8, с. 2209–2220. Англ.

6.ХБ.110.Идентификация эпитопов на нуклеокапсидном белке вируса Нипах с использованием библиотеки произвольных пептидов, экспонируемых на линейном фаге. Identification of epitopes in the nucleocapsid protein of Nipah virus using a linear phage-displayed random peptide library. Eshaghi M., Tan W.S., Yusoff K. J. Med. Virol. 2005. 75, № 1, с. 147–152. Англ.

6.ХБ.111.Вирус Анды стимулирует в эндотелиальных клетках индуцируемую интерфероном экспрессию белка MxA. Andes virus stimulates interferon-inducible MxA protein expression in endothelial cells. Khaiboullina S.F., Rizvanov A.A., Deyde V.M., Jeоr S.C. J. Med. Virol. 2005. 75, № 2, с. 267–275. Англ.

6.ХБ.112.Генетическая характеристика М-сегмента РНК балканского штамма вируса Конго-Крымской геморрагической лихорадки. Genetic characterization of the M RNA segment of a Balkan Crimean-Congo hemorrhagic fever virus strain. Papa A., Papadimitriou E., Bozovic B., Antoniadis A. J. Med. Virol. 2005. 75, № 3, с. 466–469. Англ.

6.ХБ.113.Соответствие вируса японского энцефалита клеткам Neuro-2a определяется по взаимодействию белка вирусной оболочки с высоко сульфированными гликозаминогликанами клеточной поверхности. Fitness of Japanese encephalitis virus to Neuro-2a cells is determined by interactions of the viral envelope protein with highly sulfated glycosaminoglycans on the cell surface. Chiou S.S., Liu H., Chuang C.K., Lin C.C., Chen W.J. J. Med. Virol. 2005. 76, № 4, с. 583–592. Англ.

6.ХБ.114.Инфицирование вирусом денге клеток микрососудистого эндотелия человека из разных сосудистых лож вызывает как общие, так и специфические функциональные изменения. Dengue virus infection of human microvascular endothelial cells from different vascular beds promotes both common and specific functional changes. Peyrefitte C.N., Pastorino B., Grau G.E., Lou J., Tolou H., Couissinier-Paris P. J. Med. Virol. 2006. 78, № 2, с. 229–242. Англ.

6.ХБ.115.Тип штамма Burkholderia pseudomallei, установленный по результатам гель-электрофореза в импульсном поле, не определяет клинического проявления мелиоидоза. Burkholderia pseudomallei strain type, based on pulsed-field gel electrophoresis, does not determine disease presentation in melioidoses. Cheng A.C., Day N.P., Mayo M.J., Gal D., Currie B.J. Microb. and Infect. 2005. 7, № 1, с. 104–109. Англ.

6.ХБ.116.Анализ методом микропоследовательности ДНК стимулонов теплового и холодового шока у Yersinia pestis. DNA microarray analysis of the heat- and cold-shock stimulons in Yersinia pestis. Han Y., Zhou D., Pang X., Zhang L., Song Y., et al. Microb. and Infect. 2005. 7, № 3, с. 335–348. Англ.

6.ХБ.117.Роль сигнальных механизмов МАРК во время апоптоза у мышиных макрофагов, индуцируемого инфекцией Francisella tularensis LVS . The role of MAPK signal pathways during Francisella tularensis LVS infection-induced apoptosis in murine macrophages. Hrstka R., Stulik I., Vojtesek B. Microb. and Infect. 2005. 7, № 4, с. 619–625. Англ.

6.ХБ.118.Инфекция вируса вакцины и трансдукция генов в культивируемых нейронах. Vaccinia virus infection and gene transduction in cultured neurons. Allen G.A., Denes B., Fodor I., De Leon M. Microb. and Infect. 2005. 7, № 9–10, с. 1087–1096. Англ.

6.ХБ.119.Флавивирус индуцирует экспрессию гена бета-интерферона через механизм, включающий активацию ГСП-I-зависимого ФРИ-3 и ФИ3К-зависимого NF-kappaB. Flavivirus induces interferon-beta genе expression through a pathway involving RIG-I-dependent IRF-3 and PI3K-dependent NF-kappaB activation. Chang T.H., Liao C.L., Lin Y.L. Microb. and Infect. 2006. 8, № 1, с. 157–171. Англ.

6.ХБ.120.Заражение мышей низкой дозой вирулентной Francisella tularensis типа А в аэрозоле вызывает тяжелую атрофию тимуса и истощение тимоцитов CD4⁺CD8⁺. Low dose aerosol infection of mice with virulent type A Francisella tularensis induces severe thymus atrophy and CD4⁺CD8⁺ thymocyte depletion. Chen W., Kuolee R., Austin J.W., Shen H., Che Y., Conlan J.W. Microb. Pathog. 2005. 39, № 5–6, с. 189–196. Англ.

6.ХБ.121.Orientia tsutsugamushi подавляет продуцирование альфа-фактора некроза опухоли, индуцируя в мышиных макрофагах секрецию интерлейкина-10. Orientia tsutsugamushi inhibits tumor necrosis factor alpha production by inducing interleukin 10 secretion in murine macrophages. Kim M.J., Kim M.K., Kang J.S. Microb. Pathog. 2005. 40, № 1, с. 1–7. Англ.

6.ХБ.122.Внутриклеточное размножение Legionella pneumophila зависит от аминокислотного транспортера SLC1A5 клетки-хозяина. Intracellular multiplication of Legionella pneumophila depends on host cell amino acid transporter SLC1A5. Wieland H., Ullrich S., Lang F., Neumeister B. Mol. Microbiol. 2005. 55, № 5, с. 1528–1537. Англ.

6.ХБ.123.Модельная инфекция патогенных бактерий у шелковичных червей для идентификации новых генов вирулентности. Silkworm pathogenic bacteria infection model for identification of novel virulence genes. Kaito C., Kurokawa K., Matsumoto Y., Terao Y., Kawabata S., Hamada S., Sekimizu K. Mol. Microbiol. 2005. 56, № 4, с. 934–944. Англ.

6.ХБ.124.Структурная основа для активации холерного токсина под действием человеческого комплекса ARF6-GTP. Structural basis for the activation of cholera toxin by human ARF6-GTP. O‘Neal C.J., Jobling M.G., Holmes R.K., Hol W.G.J. Science. 2005. 309, № 5737, с. 1093–1096. Англ.

6.ХБ.125.Низкомолекулярный ингибитор вирулентности Vibrio cholerae и колонизации кишечника. Small-molecule inhibitor of Vibrio cholerae virulence and intestinal colonization. Hung D.T., Shakhnovich E.A., Pierson E., Mekalanos J.J. Science. 2005. 310, № 5748, с. 670–674. Англ.

6.ХБ.126.V-антиген йерсиний формирует на конце инъектисомных игл особую структуру. The V-antigen of Yersinia forms a distinct structure at the tip of injectisome needles. Mueller C.A., Broz P., MÜller S.A., Ringler P., Erne-Brand F., et al. Science. 2005. 310, № 5748, с. 674–676. Англ.

6.ХБ.127.Создание клонотек фрагментов ДНК полных геномов разных штаммов вируса натуральной оспы. Бабкина И.Н., Сафронов П.Ф., Бабкин И.В., Уварова Е.А., Тотменин А.В., Голикова Л.Н., Михеев М.В., Серегина Е.В., Гуськов А.А., Сокунова Е.Б., Щелкунов С.Н. Вопр. вирусол. 2005. 50, № 2, с. 18–23. Рус.; рез. англ.

6.ХБ.128.Токсины холерных вибрионов. Монахова Е.В., Писанов Р.В. Молекул. генет., микробиол. и вирусол. 2005. № 1, с. 7–18. Рус.; рез. англ.

6.ХБ.129.Ингибитор транскрипции факторов вирулентности у энтеропатогенной Escherichia coli. Transcriptional inhibitor of virulence factors in enteropathogenic Escherichia coli. Gauthier A., Robertson M.L., Lowden M., et al. Antimicrob. Agents and Chemother. 2005. 49, № 10, с. 4101–4109. Англ.

6.ХБ.130.Цена приспособленности вследствие мутаций в 16S рРНК, связанных с устойчивостью Chlamydia psittaci 6BC к спектиномицину. Fitness cost due to mutations in the 16S rRNA associated with spectinomycin resistance in Chlamydia psittaci 6BC. Binet R., Maurelli A.T. Antimicrob. Agents and Chemother. 2005. 49, № 11, с. 4455–4464. Англ.

6.ХБ.131.Факторы вирулентности изолятов Escherichia coli, которые продуцируют бета-лактамазы широкого спектра типа СТХ-М. Virulence factors of Escherichia coli isolates that produce CTX-M-type extended-spectrum beta-lactamases. Pitout J.D., Laupland K.B., Church D.L., Menard M.L., Johnson J.R. Antimicrob. Agents and Chemother. 2005. 49, № 11, с. 4667–4670. Англ.

6.ХБ.132.Перспективы для ингибиторов аминоацил-tРНК-синтетазы в качестве новых антимикробных агентов. Prospects for aminoacyl-tRNA synthetase inhibitors as new antimicrobial agents. Hurdle J.G., O‘Neill A.J., Chopra I. Antimicrob. Agents and Chemother. 2005. 49, № 12, с. 4821–4833. Англ.

6.ХБ.133.Компьютерное создание агентов, которые подавляют систему ощущения кворума cep у Burkholderia cenocepacia. Computer-aided design of agents that inhibit the cep quorum-sensing system of Burkholderia cenocepacia. Riedel K., Kothe M., Kramer B., Saeb W., et al. Antimicrob. Agents and Chemother. 2006. 50, № 1, с. 318–323. Англ.

6.ХБ.134.Аргинин или нитрат повышает антибиотикочувствительность Pseudomonas aeruginosa в биопленках. Arginine or nitrate enhances antibiotic susceptibility of Pseudomonas aeruginosa in biofilms. Borriello G., Richards L., Ehrlich G.D., Stewart P.S. Antimicrob. Agents and Chemother. 2006. 50, № 1, с. 382–384. Англ.

6.ХБ.135.Мутация в бета‘-субъединице РНК-полимеразы Bacillus subtilis придает устойчивость к липиармицину. Mutation in the Bacillus subtilis RNA polymerase beta‘ subunit confers resistance to lipiarmycin. Gualtieri M., Villain-Guillot P., Latouche J., Leonetti J.P., Bastide L. Antimicrob. Agents and Chemother. 2006. 50, № 1, с. 401–402. Англ.

6.ХБ.136.Изучение вирусных белков, кодируемых геномом коронавируса ТОРС. Characterization of viral proteins encoded by the SARS-coronavirus genome. Tan Y.J., Lim S.G., Hong W. Antiviral Res. 2005. 65, № 2, с. 69–78. Англ.

6.ХБ.137.Генетическое сравнение крупного фрагмента 5‘-нетранслируемой области среди вирусов ящура с особой ссылкой на серотип Азия 1. Genetic comparison of large fragment of the 5‘ untranslated region among foot-and-mouth disease viruses with special reference to serotype Asia 1. Biswas S., Sanyal A., Hemadri D., Tosh C., et al. Arch. Virol. 2005. 150, № 11, с. 2217–2239. Англ.

6.ХБ.138.Конъюгация столбнячного анатоксина с полисахаридом, специфичным для Salmonella typhimurium PTCC 1735 O, и ее влияние на продуцирование у мышей опсонизирующих антител. Conjugation of tetanus toxoid with Salmonella typhimurium PTCC 1735 O-specific polysaccharide and its effects on production of opsonizing antibodies in a mouse model. Jazani N.H., Worobec E., Shahabi S., Nejad G.B. Can. J. Microbiol. 2005. 51, № 4, с. 319–324. Англ.

6.ХБ.139.Изменение эпидемиологии мелиоидоза? Случай острого легочного мелиоидоза с летальным исходом, завезенный из Бразилии. Changing epidemiology of melioidosis? A case of acute pulmonary melioidosis with fatal outcome imported from Brazil. Aardema H., Luijnenburg E.M., Salm E.F., Bijlmer H.A., et al. Epidemiol. and Infec. 2005. 133, № 5, с. 871–875. Англ.

6.ХБ.140.Эпидемиология человеческого бруцеллеза в определенной области северо-западной Греции. Epidemiology of human brucellosis in a defined area of north western Greece. Avdikou I., Maipa V., Alamanos Y. Epidemiol. and Infec. 2005. 133, № 5, с. 905–910. Англ.

6.ХБ.141.Экспериментальное аэрогенное распространение Salmonella Agona и Salmonella Typhimurium у поросят-отъемышей. Experimental airborne transmission of Salmonella Agona and Salmonella Typhimurium in weaned pigs. Oliveira C.J., Carvalho L.F., Garcia T.B. Epidemiol. and Infec. 2006. 134, № 1, с. 199–209. Англ.

6.ХБ.142.Определение у больных бруцеллезом внутриклеточных цитокинов, продуцируемых клетками Th1 и Th2, при помощи метода проточной цитометрии. Determination of intracellular cytokines produced by Th1 and Th2 cells using flow cytometry in patients with brucellosis. Akbulut H.H., Kilic S.S., Bulut V., Ozden M. FEMS Immunol. and Med. Microbiol. 2005. 45, № 2, с. 253–258. Англ.

6.ХБ.143.Участие продуктов генов вирулентности Yersinia enterocolitica в иммунной реакции инфицированных мышей. Involvement of the virulence gene products of Yersinia enterocolitica in the immune response of infected mice. Takeuchi O., Suzuki T., Kawamura I., et al. FEMS Immunol. and Med. Microbiol. 2005. 45, № 2, с. 321–329. Англ.

6.ХБ.144.Роль перекиси в прорастании эндоспор Bacillus anthracis. Role of superoxide in the germination of Bacillus anthracis endospores. Baillie L., Hibbs S., Tsai P., Cao G.L., Rosen G.M. FEMS Microbiol. Lett. 2005. 245, № 1, с. 33–38. Англ.

6.ХБ.145.Перенос и экспрессирование москитоцидной плазмиды pBtoxis у штаммов группы Bacillus cereus. Transfer and expression of the mosquitocidal plasmid pBtoxis in Bacillus cereus group strains. Hu X., Hansen B.M., Yuan Z., Johansen J.E., Eilenberg J., et al. FEMS Microbiol. Lett. 2005. 245, № 2, с. 239–247. Англ.

6.ХБ.146.Сравнительный анализ геномов группы Bacillus cereus и Bacillus subtilis. Comparative genome analysis of Bacillus cereus group genomes with Bacillus subtilis. Anderson I., Sorokin A., Kapatral V., Reznik G., Bhattacharya A., et al. FEMS Microbiol. Lett. 2005. 250, № 2, с. 175–184. Англ.

6.ХБ.147.Факторы патогенности шигелл и энтероинвазивной Escherichia coli. Shigella spp. and enteroinvasive Escherichia coli pathogenicity factors. Parsot C. FEMS Microbiol. Lett. 2005. 252, № 1, с. 11–18. Англ.

6.ХБ.148.Делеция sigB у Bacillus cereus влияет на свойства спор. Deletion of sigB in Bacillus cereus affects spore properties. de Vries Y.P., Hornstra L.M., Atmadja R.D., et al. FEMS Microbiol. Lett. 2005. 252, № 1, с. 169–173. Англ.

6.ХБ.149.Гиперинфекционность пассированных на человеке Vibrio cholerae может быть смоделирована выращиванием на новорожденных мышах. Hyperinfectivity of human-passaged Vibrio cholerae can be modeled by growth in the infant mouse. Alam A., Larocque R.C., Harris J.B., Vanderspurt C., et al. Infec. and Immun. 2005. 73, № 10, с. 6674–6679. Англ.

6.ХБ.150.Клеточные механизмы адъювантной активности флагеллинового компонента FljB Salmonella enterica серовара Typhimurium, потенцирующей мукозальные и системные реакции. Cellular mechanisms of the adjuvant activity of the flagellin component FljB of Salmonella enterica serovar Typhimurium to potentiate mucosal and systemic responses. Pino O., Martin M., Michalek S.M. Infec. and Immun. 2005. 73, № 10, с. 6763–6770. Англ.

6.ХБ.151.Анализ поведения мутантных по eryC Brucella suis, аттенуированных в макрофагах. Analysis of the behavior of eryC mutants of Brucella suis attenuated in macrophages. Burkhardt S., Jimenez de Bagues M.P., Liautard J.P., Kohler S. Infec. and Immun. 2005. 73, № 10, с. 6782–6790. Англ.

6.ХБ.152.Сравнение иммунных реакций на гонококковый PorB, доставляемый в виде везикул из наружной мембраны, рекомбинантного белка или репликоновых частиц вируса венесуэльского энцефалита лошадей. Comparison of immune responses to gonococcal PorB delivered as outer membrane vesicles, recombinant protein, or Venezuelan equine encephalitits virus replicon particles. Zhu W., Thomas C.E., Chen C.J., Van Dan C.N., et al. Infec. and Immun. 2005. 73, № 11, с. 7558–7568. Англ.

6.ХБ.153.Нетоксичные производные шига-токсина Escherichia coli обладают адъювантной активностью в отношении антигенспецифичных иммунных реакций вследствие активации дендритных клеток. Nontoxic Shiga toxin derivatives from Escherichia coli possess adjuvant activity for the augmentation of antigen-specific immune responses via dendritic cell activation. Ohmura M., Yamamoto M., Tomiyama-Miyaji C., et al. Infec. and Immun. 2005. 73, № 7, с. 4088–4097. Англ.

6.ХБ.154.Для эффективной очистки от Brucella abortus требуется MyD88, но не toll-подобные рецепторы 4 и 2. MyD88, but not toll-like receptors 4 and 2 is required for efficient clearance of Brucella abortus. Weiss D.S., Takeda K., Akira S., Zychlinsky A., Moreno E. Infec. and Immun. 2005. 73, № 8, с. 5137–5143. Англ.

6.ХБ.155.Сходство в генной экспрессии в альвеолярных макрофагах человека при реакциях на Pseudomonas aeruginosa и Burkholderia cepacia. Similarity of gene expression patterns in human alveolar macrophages in response to Pseudomonas aeruginosa and Burkholderia cepacia. Worgall S., Heguy A., Luettich K., O‘Connor T.P., et al. Infec. and Immun. 2005. 73, № 8, с. 5262–5268. Англ.

6.ХБ.156.Экспрессирование в макрофагах супрессора передачи цитокинового сигнала 3, зависимое от островка патогенности 2 сальмонелл. Salmonella pathogenicity island 2-dependent expression of suppressor of cytokine signalling 3 in macrophages. Uchiya K., Nikai T. Infec. and Immun. 2005. 73, № 9, с. 5587–5594. Англ.

6.ХБ.157.Изучение RyhB Vibrio cholerae: регулон RyhB и роль ryhB в формировании биопленки. Characterization of Vibrio cholerae RyhB: the RyhB regulon and role of ryhB in biofilm formation. May A.R., Craig S.A., Payne S.M. Infec. and Immun. 2005. 73, № 9, с. 5706–5719. Англ.

6.ХБ.158.Циклический дигуанилат регулирует экспрессию генов вирулентности Vibrio cholerae. Cyclic diguanylate regulates Vibrio cholerae virulence gene expression. Tischler A.D., Camilli A. Infec. and Immun. 2005. 73, № 9, с. 5873–5882. Англ.

6.ХБ.159.Ген virB12 Brucella abortus экспрессируется во время инфекции, но не является важным компонентом системы секреции типа IV. Brucella abortus virB12 is expressed during infection but is not an essential component of the type IV secretion system. Sun Y.H., Rolan H.G., den Hartigh A.B., Sondervan D., Tsolis R.M. Infec. and Immun. 2005. 73, № 9, с. 6048–6054. Англ.

6.ХБ.160.Идентификация у Brucella suis нового фактора вирулентности – BvfA. Identification of a new virulence factor, BvfA, in Brucella suis. Lavigne J.P., Patey G., Sangari F.J., et al. Infec. and Immun. 2005. 73, № 9, с. 5524–5529. Англ.

6.ХБ.161.Роль в вирулентности Brucella abortus белка, обладающего лектин-подобной активностью. Role in virulence of a Brucella abortus protein exhibiting lectin-like activity. Vemulapalli T.H., Vemulapalli R., Schurig G.G., et al. Infec. and Immun. 2006. 74, № 1, с. 183–191. Англ.

6.ХБ.162.Опосредованное капсулой уклонение от иммунной системы: новая гипотеза, объясняющая аспекты патогенеза при брюшном тифе. Capsule-mediated immune evasion: a new hypothesis explaining aspects of typhoid fever pathogenesis. Raffatellu M., Chessa D., Wilson R.P., et al. Infec. and Immun. 2006. 74, № 1, с. 19–27. Англ.

6.ХБ.163.Конго-Крымская геморрагическая лихорадка: случай внутрибольничного распространения. Crimean-Congo hemorrhagic fever: a case of nosocomial transmission. Harxhi A., Pilaca A., Delia Z., Pano K., Rezza G. Infection. 2005. 33, № 4, с. 295–296. Англ.

6.ХБ.164.Случай внутричерепного абсцесса, обусловленного Brucella melitensis. A case of intracranial abscess due to Brucella melitensis. Gundes S., Meric M., Willke A., Erdenlig S., Koc K. Int. J. Infec. Diseases. 2004. 8, № 6, с. 379–381. Англ.

6.ХБ.165.Классическая геморрагическая лихорадка денге вследствие двух инфекций денге с промежутком 20 лет или более: Гавана, эпидемия денге 3, 2001–2002 гг.. Classical dengue hemorrhagic fever resulting from two dengue infections spaced 20 years or more apart: Havana, Dengue 3 epidemic, 2001–2002. Gonzalez D., Castro O.E., Couri G., et al. Int. J. Infec. Diseases. 2005. 9, № 5, с. 280–285. Англ.

6.ХБ.166.Случай острого гепатита вследствие бруцеллеза. A case report of acute hepatitis due to brucellosis. Erdem I., Cicekler N., Mert D., et al. Int. J. Infec. Diseases. 2005. 9, № 6, с. 349–350. Англ.

6.ХБ.167.Спонтанная нетравматическая газовая гангрена, вызванная Clostridium perfringens. Spontaneous nontraumatic gas gangrene due to Clostridium perfringens. Yildiz T., Gundes S., Willke A., Solak M., Toker K. Int. J. Infec. Diseases. 2006. 10, № 1, с. 83–85. Англ.

6.ХБ.168.Рост и продуцирование вируса денге в клетках С6/36 и идентификация ламинин-связывающего белка как предполагаемого рецепторного белка серотипа 3 и 4. Growth and production of the dengue virus in C6/36 cells and identification of a laminin-binding protein as a candidate serotype 3 and 4 receptor protein. Sakoonwatanyoo P., Boonsanay V., Smith D.R. Intervirology. 2006. 49, № 3, с. 161–172. Англ.

6.ХБ.169.Основанная на геноме филогения поксвирусов. Genome-based phylogeny of Poxvirus. Xing K., Deng R., Wang J., Feng J., Huang M., Wang X. Intervirology. 2006. 49, № 4, с. 207–214. Англ.

6.ХБ.170.Высокая устойчивость к Β-лактаму и синтез клеточной стенки, катализируемый mecA-гомологом Staphylococcus sciuri, интродуцированным в Staphylococcus aureus. High-level Β-lactam resistance and cell wall synthesis catalyzed by the mecA homologue of Staphylococcus sciuri introduced into Staphylococcus aureus. Severin A., Wu S.W., Tabei K., Tomasz A. J. Bacteriol. 2005. 187, № 19, с. 6651–6658. Англ.

6.ХБ.171.Сайт-направленный мутагенез и структурные исследования позволяют считать, что протеаза прорастания, GPR, в спорах бацилл является атипичной протеазой из аспартовой кислоты. Site-directed mutagenesis and structural studies suggest that the germination protease, GPR, in spores of Bacillus species is an atypical aspartic acid protease. Carroll T.M., Setlow P. J. Bacteriol. 2005. 187, № 20, с. 7119–7125. Англ.

6.ХБ.172.Сборка и функция связанной со споровой оболочкой трансглутаминазы Bacillus subtilis. Assembly and function of a spore coat-associated transglutaminase of Bacillus subtilis. Zilhao R., Isticato R., Martins L.O., Steil L., Volker U., et al. J. Bacteriol. 2005. 187, № 22, с. 7753–7754. Англ.

6.ХБ.173.ToxT Vibrio cholerae независимо активирует по-разному транскрибируемые гены aldA и tagA. Vibrio cholerae ToxT independently activates the divergently transcribed aldA and tagA genes. Withey J.H., DiRita V.J. J. Bacteriol. 2005. 187, № 23, с. 7890–7900. Англ.

6.ХБ.174.Alpha(v)beta6-интегриновый рецептор для вируса ящура экспрессируется конститутивно на клетках эпителия крупного рогатого скота. The alpha(v)beta6 integrin receptor for foot-and-mouth disease virus is expressed constitutively on the epithelial cells targeted in cattle. Monaghan P., Gold S., Simpson J., Zhang Z., et al. J. Gen. Virol. 2005. 86, ч. 10, с. 2769–2780. Англ.

6.ХБ.175.Новый механизм иммуносупрессии под действием гемагглютинина вируса гриппа: избирательное подавление транскрипции интерлейкина 12 р35 в дендритных клетках, полученных из костного мозга мыши. Novel mechanism of immunosuppression by influenza virus haemagglutinin: selective suppression of interleukin 12 p35 transcription in murine bone marrow-derived dendritic cells. Noone C.M., Lewis E.A., Frawely A.B., Newman R.W., et al. J. Gen. Virol. 2005. 86, ч. 7, с. 1885–1890. Англ.

6.ХБ.176.Конъюнктивит при мышиной оспе. Роль опосредованного Fas/FasL апоптоза эпителиальных клеток в диссеминации вируса. Mousepox conjunctivities: the role of Fas/FasL-mediated apoptosis of epithelial cells in virus dissemination. Krzyzowska M., Polanczyk M., Bas M., Cymerys J., et al. J. Gen. Virol. 2005. 86, ч. 7, с. 2007–2018. Англ.

6.ХБ.177.Зависимое от контакта подавление роста у Escherichia coli. Contact-dependent inhibition of growth in Escherichia coli. Aoki S.K., Pamma R., Hernday A.D., Bickham J.E., et al. Science. 2005. 309, № 5738, с. 1245–1248. Англ.

6.ХБ.178.Чумная бактерия нацеливается во время инфекции на клетки иммунной системы. Plague bacteria target immune cells during infection. Marketon M.M., DePaolo R.W., DeBord K.L., Jabri B., Schneewind O. Science. 2005. 309, № 5741, с. 1739–1741. Англ.

6.ХБ.179.Статины могут использоваться для контроля над репликацией некоторых вирусов, включая ВИЧ-1. Statins could be used to control replication of some viruses, including HIV-1. Gilberg C., Bergeron M., Methot S., et al. Viral Immunol. 2005. 18, № 3, с. 474–489. Англ.

6.ХБ.180.ДНК-примирующие конструкции Е и NS1: гомологичные белки, усиливающие иммунизацию, для повышения иммунной реакции против денге у мышей. DNA priming E and NS1 constructs – homologous proteins boosting immunization strategy to improve immune response against dengue in mice. Mellado-Sanchez G., Garcia-Cordero J., Luria-Perez R., et al. Viral Immunol. 2005. 18, № 4, с. 709–721. Англ.

Наверх
<<Назад	<<Содержание>>	Далее>>