Химическая и биологическая безопасность

1-2.ХБ.249. Простой анализ для определения антивирусной активности в отношении вируса Конго-Крымской геморрагической лихорадки. A simple assay for determining antiviral activity against Crimean-Congo hemorrhagic fever virus. Paragas J., Whitehous C.A., Endy T.P., Bray M. Antiviral Res. 2004. 62, № 1, с. 21–25. Англ.

1-2.ХБ.250. Распространение вируса, воспаление ткани и антивирусная реакция в мозге чувствительных и невосприимчивых к флавивирусам мышей, остро инфицированных вирусом энцефалита долины Муррей. Virus spread, tissue inflammation and antiviral response in brains flavivirus susceptible and resistant mice, acutely infected with Murray Valley encephalitis virus. Silvia O.J., Pantelic L., Mackenzie J.S., Shellam G.R., Papadimitriou J., Urosevic N. Arch. Virol. 2004. 149, № 3, с. 447–464. Англ.

1-2.ХБ.251.Анализ полиморфизма по длине флуоресцентных амплифицированных фрагментов изолятов Bacillus anthracis, Bacillus cereus и Bacillus thuringiensis. Fluorescent amplified fragment length polymorphism analysis of Bacillus anthracis, Bacillus cereus and Bacillus thuringiensis isolates. Hill K.K., et al. Appl. and Environ. Microbiol. 2004. 70, № 2, с. 1068–1080. Англ.

1-2.ХБ.252.Транспозоновый мутагенез облигатного внутриклеточного патогена Rickettsia prowazekii. Transposon mutagenesis of the obligate intracellular pathogen Rickettsia prowazekii. Qin A., Tucker A.N., Hines A., Wood D.O. Appl. and Environ. Microbiol. 2004. 70, № 5, с. 2816–2822. Англ.

1-2.ХБ.253.Относительное экспрессирование гена нейротоксина у Clostridium botulinum типа В, обнаруженное с использованием количественной ПЦР с обратной транскрипцией. Relative neurotoxin gene expression in Clostridium botulinum type B, determined using quantitative reverse transcription-PCR. Lovenklev M., Holst E., Borch E., Radstrom P. Appl. and Environ. Microbiol. 2004. 70, № 5, с. 2919–2927. Англ.

1-2.ХБ.254.Лабораторная оценка совместимости и синергизма энтомопатогенных грибов Beauveria bassiana и дельтаметрина против устойчивых штаммов Boophilus microplus. Laboratory evaluation of the compatibility and the synergism between the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana and deltamethrin to resistant strains of Boophilus microplus. Bahiense Thiago C., Bittencourt Vania R.E.P. Ann. N Y Acad. Sci. 2004. № 1026, с. 319–322. Англ.

1-2.ХБ.255.Новый метод кривой "концентрация–гибель" для оценки бактерицидной активности антибиотиков в динамической модели in vitro. Novel concentration-killing curve method for estimation of bactericidal potency of antibiotics in an in vitro dynamic model. Liu Y.Q., Zhang Y.Z., Gao P.J. Antimicrob. Agents and Chemother. 2004. 48, № 10, с. 3884–3891. Англ.

1-2.ХБ.256.Карбенициллиназа CARB-9, кодируемая в области VCR Vibrio cholerae не-01, не-0139, принадлежит к семейству кодируемых кассетой бета-лактамаз. CARB-9, a carbenicillinase encoded in the VCR region of Vibrio cholerae non-01, non-0139 belongs to a family of cassette-encoded beta-lactamases. Petroni A., Melano R.G., Saka H.A., Garutti A., Mange L., et al. Antimicrob. Agents and Chemother. 2004. 48, № 10, с. 4042–4046. Англ.

1-2.ХБ.257.Бета-лактамаза AmpC клинического изолята Escherichia coli придает устойчивость к широкому спектру цефалоспоринов. AmpC beta-lactamase in an Escherichia coli clinical isolate confers resistance to expanded-spectrum cephalosporins. Mammeri H., Nazic H., Naas T., Poirel L., Leotard S., Nordmann P. Antimicrob. Agents and Chemother. 2004. 48, № 10, с. 4050–4053. Англ.

1-2.ХБ.258.Эффективность новых ингибиторов гемагглютинина-нейраминидазы, ВСХ 2798 и ВСХ 2855, против вирусов парагриппа человека in vitro и in vivo. Efficacy of novel hemagglutinin-neuraminidase inhibitors BCX 2798 and BCX 2855 against human parainfluenza viruses in vitro and in vivo. Alymova I.V., Taylor G., Takimoto T., Lin T.H., Chand P., Babu Y.S., Li C., Xiong X., Portner A. Antimicrob. Agents and Chemother. 2004. 48, № 5, с. 1495–1502. Англ.

1-2.ХБ.259.Устойчивость к суперинфицированию клеток Vero, персистентно инфицированных вирусом Хунин. Resistance to superinfection of Vero cells persistently infected with Junin virus. Ellenberg P., Edreira M., Scolaro L. Arch. Virol. 2004. 149, № 3, с. 507–522. Англ.

1-2.ХБ.260.Идентификация GRP78 (BiP) как рецепторного элемента, экспрессируемого на клетках печени, для вируса денге серотипа 2. Identification of GRP78 (BiP) as a liver cell expressed receptor element for dengue virus serotype 2. Jindadamrongwesh S., Thepparit C., Smith D.R. Arch. Virol. 2004. 149, № 5, с. 915–927. Англ.

1-2.ХБ.261.Способы распространения хантавируса в популяции Clethrionomys rufocanus bedfordiae, выведенные на основании анализов митохондриальной и микросателлитной ДНК. Modes of hantavirus transmission in a population of Clethrionomys rufocanus bedfordiae inferred from mitochondrial and microsatellite DNA analyses. Iwasa M.A., Kariwa H., Cui B.Z., Lokugamage K., Lokugamage N., Hagiya T., Mizutani T., Takashima I. Arch. Virol. 2004. 149, № 5, с. 929–941. Англ.

1-2.ХБ.262.Термодинамический анализ структурной стабильности субъединицы B шига-токсина. Thermodynamic analysis of the structural stability of the Shiga toxin B-subunit. Pina David G., Gomez Javier, Villar Enrique, Johannes Ludger, Shnyrov Valery L. Biochemistry. 2003. 42, № 31, с. 9498–9506. Англ.

1-2.ХБ.263.Синтез новой библиотеки ингибиторов для летального фактора токсина Bacillus anthracis. Synthesis of a new inhibitor library for the lethal factor of the B. anthracis toxin. Holzer Philipp, Kolb Hartmuth C., Sharpless K. Barry. Chimia. 2003. 57, № 7–8, с. 426. Англ.

1-2.ХБ.264.Недостаток созревания дендритных клеток под действием растительного токсина рицина. Lack of dendritic cell maturation by the plant toxin ricin. Smith Daniel C., Salio Mariolina, Lord J. Michael, Roberts Lynne M., Cerundolo Vincenzo. Eur. J. Immunol. 2004. 34, № 8, с. 2149–2157. Англ.

1-2.ХБ.265.Белковая секреция типа II Legionella pneumophila повышает вирулентность при модельной болезни легионеров у мышей A/J. Legionella pneumophila type II protein secretion promotes virulence in the A/J mouse model of Legionnaires disease pneumonia. Rossier O., Starkenburg S.R., Cianciotto N.P. Infec. and Immun. 2004. 72, № 1, с. 310–321. Англ.

1-2.ХБ.266.Сибиреязвенный летальный токсин индуцирует апоптоз эпителиальных клеток человека. Anthrax lethal toxin induces human endothelial cell apoptosis. Kirby J.E. Infec. and Immun. 2004. 72, № 1, с. 430–439. Англ.

1-2.ХБ.267.Шероховатые мутанты Brucella abortus являются цитопатичными для культивируемых макрофагов. Brucella abortus rough mutants are cytopathic for macrophages in culture. Pei J., Ficht T.A. Infec. and Immun. 2004. 72, № 1, с. 440–450. Англ.

1-2.ХБ.268.Роль костимуляторных молекул В7 в опосредовании системных и мукозальных реакций антителообразования на аттенуированные Salmonella enterica серовара Typhimurium и их клонированный антиген. Role of B7 costimulatory molecules in mediating systemic and mucosal antibody responses to attenuated Salmonella enterica serovar Typhimurium and its cloned antigen. Garcia C.A., Martin M., Michalek S.M. Infec. and Immun. 2004. 72, № 10, с. 5824–5831. Англ.

1-2.ХБ.269.Субъединица В термолабильного энтеротоксина Escherichia coli индуцирует как каспаза-зависимые, так и -независимые механизмы гибели Т-клеток CD8^*. The B subunit of Eschericia coli heat-labile enterotoxin induces both caspase-dependent and -independent cell death pathways in CD8^* T cells. Salmond R.J., Williams R., Hirst T.R., Williams N.A. Infec. and Immun. 2004. 72, № 10, с. 5850–5857. Англ.

1-2.ХБ.270.Для стабильного комплекса Dot/Icm Legionella pneumophila требует DotU и IcmF. Legionella pneumophila DotU and IcmF are required for stability of the Dot/Icm complex. Sexton J.A., Miller J.L., Yoneda A., Kehl-Fie T.E., Vogel J.P. Infec. and Immun. 2004. 72, № 10, с. 5983–5992. Англ.

1-2.ХБ.271.Аминокислотная последовательность классического TcpA Vibrio cholerae индуцирует защитные антитела, которые связываются с областью, предположительно важной для структуры сорегулируемых с токсином пилей. A Vibrio cholerae classical TcpA amino acid sequence induces protective antibody that binds an area hypothesized to be important for toxin-coregulated pilus structure. Taylor R.K., Kirn T.J., Meeks M.D., Wade T.K., Wade W.F. Infec. and Immun. 2004. 72, № 10, с. 6050–6060. Англ.

1-2.ХБ.272.Секреция типа III: система доставки как фактор вирулентности, важный для патогенности Burkholderia mallei. Type III secretion: a virulence factor delivery system essential for the pathogenicity of Burkholderia mallei . Ulrich R.L., DeShazer D. Infec. and Immun. 2004. 72, № 2, с. 1150–1154. Англ.

1-2.ХБ.273.Идентификация и клонирование иммунодоминантных антигенов Coxiella burnetii. Identification and cloning of immunodominant antigens of Coxiella burnetii. Zhang G., Kiss K., Seshadri R., Hendrix L.R., Samuel J.E. Infec. and Immun. 2004. 72, № 2, с. 844–852. Англ.

1-2.ХБ.274.Экзогенный гамма- и альфа/бета-интерферон спасает человеческие макрофаги от гибели, индуцируемой Bacillus anthracis. Exogenous gamma and alpha/beta interferon rescues human macrophages from cell death induced by Bacillus anthracis. Gold J.A., Hoshino Y., Hashino S., Jones M.B., Nolan A., Weiden M.D. Infec. and Immun. 2004. 72, № 3, с. 1291–1297. Англ.

1-2.ХБ.275.Повышение активностей c-Jun N-терминальной киназы/активируемой стрессом протеинкиназы и р38 в макрофагах моноцитарного происхождения после поглощения Legionella pneumophila. Increases in c-Jun N-terminal kinase/stress-activated protein kinase and p38 activity in monocyte-derived macrophages following the uptake of Legionella pneumophila. Welsh C.T., Summersgill J.T., Miller R.D. Infec. and Immun. 2004. 72, № 3, с. 1512–1518. Англ.

1-2.ХБ.276.Модель передачи йерсиний блохами для оценки эффективности вакцины против бубонной чумы, приобретаемой естественным путем. Flea-borne transmission model to evaluate vaccine efficacy against naturally acquired bubonic plague. Jarrett C.O., Sebbane F., Adamovicz J.J., Andrews G.P., Hinnebusch B.J. Infec. and Immun. 2004. 72, № 4, с. 2052–2056. Англ.

1-2.ХБ.277.Фагоцитоз апоптотических клеток повышает чувствительность макрофагов к заражению Coxiella burnetii фазы II посредством снижения образования окиси азота. Phagocytosis of apoptotic cells increases the susceptibility of macrophages to infection with Coxiella burnetii phase II through down-modulation of nitric oxide production. Zamboni D.S., Rabinovitch M. Infec. and Immun. 2004. 72, № 4, с. 2075–2080. Англ.

1-2.ХБ.278.Молекулярное клонирование и изучение cgt, гена транспортера циклического бета-1,2-глюкана Brucella abortus, и его роль в вирулентности. Molecular cloning and characterization of cgt, the Brucella abortus cyclic beta-1,2-glucan transporter gene, and its role in virulence. Roset M.S., Ciocchini A.E., Ugalde R.A., Inon de Iannino N. Infec. and Immun. 2004. 72, № 4, с. 2263–2271. Англ.

1-2.ХБ.279.Присутствие пилей на поверхности Francisella tularensis. Presence of pili on the surface of Francisella tularensis. Gil H., Benach J.L., Thanassi D.G. Infec. and Immun. 2004. 72, № 5, с. 3042–3047. Англ.

1-2.ХБ.280.Формирование вакуоли репликации Legionella pneumophila включает быструю мобилизацию белков ранней секреторной системы. Legionella pneumophila replication vacuole formation involves rapid recruitment of proteins of the early secretory system. Derre I., Isberg R.R. Infec. and Immun. 2004. 72, № 5, с. 3048–3053. Англ.

1-2.ХБ.281 .В реакции на внутриклеточные споры Bacillus anthracis макрофаги высвобождают альфа-фактор некроза опухоли и интерлейкин-12. Macrophages release tumor necrosis factor alpha and interleukin-12 in response to intracellular Bacillus anthracis spores. Pickering A.K., Merkel T.J. Infec. and Immun. 2004. 72, № 5, с. 3069–3072. Англ.

1-2.ХБ.282.Вирулентные и авирулентные штаммы Francisella tularensis предупреждают подкисление и созревание своих фагосом и ускользают в цитоплазму человеческих макрофагов. Virulent and avirulent strains of Francisella tularensis prevent acidification and maturation of their phagosomes and escape into the cytoplasm in human macrophages. Clemens D.L., Lee B.Y., Horwitz M.A. Infec. and Immun. 2004. 72, № 6, с. 3204–3217. Англ.

1-2.ХБ.283.Усиление цитотоксичности сибиреязвенного летального токсина: подгруппа моноклональных антител к протективному антигену увеличивает опосредованное летальным токсином уничтожение мышиных макрофагов. Enhancement of anthrax lethal toxin cytotoxicity: a subset of monoclonal antibodies against protective antigen increases lethal toxin-mediated killing of murine macrophages. Mohamed N., Li J., Ferreira C.S., Little S.F., Friedlander A.M., Spitalny G.L., Casey L.S. Infec. and Immun. 2004. 72, № 6, с. 3276–3283. Англ.

1-2.ХБ.284.Белок LetE повышает экспрессирование бактерией Legionella pneumophila многих LetA/LetS-зависимых свойств, связанных с передачей. The LetE protein enhances expression of multiple LetA/LetS-dependent transmission traits by Legionella pneumophila. Bachman M.A., Swanson M.S. Infec. and Immun. 2004. 72, № 6, с. 3284–3293. Англ.

1-2.ХБ.285.Изучение генов icmH и icmF, необходимых Legionella pneumophila для внутриклеточного роста, – генов, которые присутствуют у многих бактерий, связанных с эукариотическими клетками. Characterization of the icmH and icmF genes required for Legionella pneumophila intracellular growth, genes that are present in many bacteria associated with eukaryotic cells. Zusman T., Feldman M., Halperin E., Segal G. Infec. and Immun. 2004. 72, № 6, с. 3398–3409. Англ.

1-2.ХБ.286.Вклад иммунологической памяти в защитный иммунитет, создаваемый вакциной, основанной на протективном антигене Bacillus anthracis. Contribution of immunological memory to protective immunity conferred by a Bacillus anthracis protective antigen-based vaccine. Marcus H., Danieli R., Epstein E., Velan B., Shafferman A., Reuveny S. Infec. and Immun. 2004. 72, № 6, с. 3471–3477. Англ.

1-2.ХБ.287.Влияние антител на взаимодействие риккетсий с клеткой-хозяином. Effect of antibody on the rickettsia-host cell interaction. Feng H.M., Whitworth T., Popov V., Walker D.H. Infec. and Immun. 2004. 72, № 6, с. 3524–3530. Англ.

1-2.ХБ.288.Генетический контроль над естественной устойчивостью мышиных макрофагов к инфекции Coxiella burnetii in vitro: макрофаги рестриктивных штаммов контролируют созревание вакуолей, содержащих паразитов. Genetic control of natural resistance of mouse macrophages to Coxiella burnetii infection in vitro: macrophages from restrictive strains control parasitophorous vacuole maturation. Zamboni D.S. Infec. and Immun. 2004. 72. № 4, с. 2395–2399. Англ.

1-2.ХБ.289.Первый асимметрический полный синтез тетродотоксина. First asymmetric total synthesis of tetrodotoxin. Ohyabu Norio, Nishikawa Toshio, Isobe Minoru. J. Amer. Chem. Soc. 2003. 125, № 29, с. 8798–8804. Библ. 71. Англ.

1-2.ХБ.290.Островок патогенности вибрионов эпидемического Vibrio cholerae формирует продукты точного экстрахромосомного кольцевого вырезания. The vibrio pathogenicity island of epidemic Vibrio cholerae forms precise extrachromosomal circular excision products. Rajanna C., Wang J., Zhang D., Xu Z., Ali A., Hou Y.-M., Karaolis D.K.R. J. Bacteriol. 2003. 185, № 23, с. 6893–6901. Англ.

1-2.ХБ.291.Новый тип особой трансдукции CTXΦ или его сателлитного фага RS1 опосредуется у Vibrio cholerae нитевидным фагом VGJΦ. Novel type of specialized transduction for CTXΦ or its satellite phage RSI mediated by filamentous phage VGJΦ in Vibrio cholerae. Campos J., Martinez E., Marrero K., Silva Y., Rodriguez B.L., et al. J. Bacteriol. 2003. 185, № 24, с. 7231–7240. Англ.

1-2.ХБ.292.Функциональная основа устойчивости к микофенольной кислоте IPM-дегидрогеназы Candida albicans. The functional basis of mycophenolic acid resistance in Candida albicans IMP dehydrogenase. Kohler Gerwald A., Gong Xin, Bentink Stefan, Theiss Stephanie, Pagani Gina M., Agabian Nina, Hedstrom Lizbeth. J. Biol. Chem. 2005. 280, № 12, с. 11295–11302. Англ.

1-2.ХБ.293.Белок сальмонелл вызывает гибель макрофагов путем индуцирования аутофагии. A Salmonella protein causes macrophage cell death by inducing autophagy. Hernandez L.D., Pypaert M., Flavell R.A., Galan J.E. J. Cell Biol. 2003. 163, № 5, с. 1123–1131. Англ.

1-2.ХБ.294.Требования к последовательности и вторичной структуре высококонсервативного элемента для активности внутреннего сайта вхождения рибосомы и связывания eIF4G и вируса ящура. Sequence and secondary structure requirements in a highly conserved element for foot-and-mouth disease virus internal ribosome entry side activity and eIF4G binding. Bassili G., Tzima E., Song Y., Saleh L., Ochs K., Niepmann M. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 9, с. 2555–2565. Англ.

1-2.ХБ.295.Поксвирусные геномы: филогенетический анализ. Poxvirus genomes: a phylogenetic analysis. Gubser C., Hue S., Kellam P., Smith G.L. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 1, с. 105–117. Англ.

1-2.ХБ.296.Одна точечная мутация в белке prM вируса клещевого энцефалита вызывает уменьшение выделения вирусных частиц. Single point mutation in tick-borne encephalitis virus prM protein induces a reduction of virus particle secretion. Yoshii K., Konno A., Goto A., Nio J., Obara M., Ueki T., et al. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 10, с. 3049–3058. Англ.

1-2.ХБ.297.Подавление репликации вируса ящура мелкой интерферирующей РНК. Inhibition of foot-and-mouth disease virus replication by small interfering RNA. Kahana R., Kuznetzova L., Rogel A., Shemesh M., Hai D., Yadin H., Stram Y. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 11, с. 3213–3217. Англ.

1-2.ХБ.298.Инфекция хантавируса Тула в клетках Vero E6 индуцирует апоптоз, включающий активацию каспазы 8. Tula hantavirus infection of Vero E6 cells induces apoptosis involving caspase 8 activation. Li X.D., Kukkonen S., Vapalahti O., Plyusnin A., Lankinen H., Vaheri A. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 11, с. 3261–3268. Англ.

1-2.ХБ.299.Сравнение геномной последовательности FP9, аттенуированного, адаптированного к культуре европейского штамма вируса оспы птиц с таковыми вирулентных американских и европейских вирусов. Comparison of the genome sequence of FP9, an attenuated tissue culture-adapted European strain of fowl-poxvirus, with those of virulent American and European viruses. Laidlaw S.M., Skinner М.A. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 2, с. 305–322. Англ.

1-2.ХБ.300.Ультраструктура сайта репликации в клетках ВНК-38, инфицированных вирусом ящура. The ultrastructure of the developing replication site in food-and-mouth disease virus-infected BHK-38 cells. Monaghan P., Cook H., Jackson T., Ryan M., Wileman T. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 4, с. 933–946. Англ.

1-2.ХБ.301.Инициация зависимой от вирусной РНК полимеризации РНК. Initiation of viral RNA-dependent RNA polymerization. van Dijk A.A., Makeyev E.V., Bamford D.H. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 5, с. 1077-1093.. Англ.

1-2.ХБ.302.Белок L хантавируса Тула является 250-кД перинуклеарным белком, связанным с мембраной. Tula hantavirus L protein is a 250 kDa perinuclear membrane-associated protein. Kukkonen S.K., Vaheri A., Plyusnin A. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 5, с. 1181–1189. Англ.

1-2.ХБ.303.CrmA вируса коровьей оспы, SERP2 вируса миксомы и бакуловирусный Р35 не являются функционально взаимозаменяемыми ингибиторами каспазы при поксвирусных инфекциях. Cowpox virus CrmA, myxoma virus SERP2 and baculovirus P35 are not functionally interchangeable caspase inhibitors in poxvirus infections. Nathaniel R., MacNeill A.L., Wang Y.X., Turner P.C., Moyer R.W. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 5, с. 1267–1278. Англ.

1-2.ХБ.304.Изменения в генотипе вируса японского энцефалита (ЯЭ), циркулирующего в Северном Вьетнаме: значение для частых интродукций вируса ЯЭ из Юго-Восточной Азии в Восточную Азию. Shift in Japanese encephalitis virus (JEV) genotype circulating in northern Vietnam: implications for frequent introductions of JEV from Southeast Asia to East Asia. Nga P.T., del Сarmen Parquet M., Cuong V.D., Ma S.P., Hasebe F., et al. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 6, с. 1625–1631. Англ.

1-2.ХБ.305 .Инфекция вируса денге в монослоях сосудистого эндотелия индуцирует высвобождение ИЛ-8, плотное соединение и динамическую реорганизацию цитоскелета, способствующих повышению проницаемости. IL8 release, tight junction and cytoskeleton dynamic reorganization conducive to permeability increase are induced by dengue virus infection of microvascular endothelial monolayers. Talavera D., Castillo A.M., Dominguez M.C., Guttierrez A.E., Meza I. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 7, с. 1801–1813. Англ.

1-2.ХБ.306.Вирус Belo Horizonte: подобный вирусу вакцины вирус, не имеющий гена телец включений, выделенный от инфицированных мышей. Belo Horizonte virus: a vaccinia-like virus lacking the A-type inclusion body gene isolated from infected mice. Trindade G.S., da Fonseca F.G., Marques J.T., Diniz S., Leite J.A., et al. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 7, с. 2015–2021. Англ.

1-2.ХБ.307.Расширение клеточного тропизма вируса ящура несмотря на репликацию в постоянной окружающей среде. Expansion of host-cell tropism of foot-and-mouth disease virus despite replication in a constant environment. Ruiz-Jarabo C.M., Pariente N., Baranowski E., Davila M., Gomez-Mariano G., Domingo E. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 8, с. 2289–2297. Англ.

1-2.ХБ.308.Идентификация домена гомотипичного взаимодействия корового белка вируса денге типа 2. Identification of the homotypic interaction domain of the core protein of dengue virus type 2. Wang S.H., Syu W.J., Hu S.T. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 8, с. 2307–2314. Англ.

1-2.ХБ.309.Количественный анализ нагрузки РНК вируса ящура в тканях быка: значение для определения места вирусной персистенции. Quantitative analysis of foot-and-mouth disease virus RNA loads in bovine tissues: implications for the site of viral persistence. Zhang Z., Alexandersen S. J. Gen. Virol. 2004. 85, ч. 9, с. 2567–2575. Англ.

1-2.ХБ.310.Роль актиновых филаментов в нацеливании нуклеокапсидного белка вируса Конго-Крымской геморрагической лихорадки на перинуклеарные области клеток млекопитающих. Role of actin filaments in targeting of Crimean Congo hemorrhagic fever virus nucleocapsid protein to perinuclear regions of mammalian cells. Andersson I., Simon M., Lundkvist A., Nilsson M., Holmstrom A., Elgh F., Mirazimi A. J. Med. Virol. 2004. 72, № 1, с. 83–93. Англ.

1-2.ХБ.311.Инфицирование приматов через слизистую оболочку аренавирусом может защищать их от летальной геморрагической лихорадки. Mucosal arenavirus infection of primates can protect them from lethal hemorrhagic fever. Rodas J.D., Lukashevich I.S., Zapata J.C., Cairo C., Tikhonov I., Djavani M., Pauza C.D., Salvato M.S. J. Med. Virol. 2004. 72, № 3, с. 424–435. Англ.

1-2.ХБ.312.Разная эффективность связывания между оболочечным белком вариантов вируса японского энцефалита и гепарансульфатом на клеточной поверхности. Differential binding efficiency between the envelope protein of Japanese encephalitis virus variants and heparan sulfate on the cell surface. Liu H., Chiou S.S., Chen W.J. J. Med. Virol. 2004. 72, № 4, с. 618–624. Англ.

1-2.ХБ.313.Растворимость, иммуногенность и физические свойства нуклеокапсидного белка вируса Нипах, продуцированного в Escherichia coli. Solubility, immunogenicity and physical properties of the nucleocapsid protein of Nipah virus produced in Escherichia coli. Tan W.S., Ong S.T., Eshaghi M., Foo S.S., Yusoff K. J. Med. Virol. 2004. 73, № 1, с. 105–112. Англ.

1-2.ХБ.314.Уровни интерлейкина-10 у больных лихорадкой денге: некоторые данные, полученные в исключительных эпидемиологических условиях на Кубе. IL-10 levels in dengue patients: some findings from the exceptional epidemiological conditions in Cuba. Perez A.B., Garcia G., Sierra B., Alvarez M., Vazquez S., et al. J. Med. Virol. 2004. 73, № 2, с. 230–234. Англ.

1-2.ХБ.315.Жизненный цикл коронавируса SARS в клетках Vero E6. The life cycle of SARS coronavirus in Vero E6 cells. Qinfen Z., Jinming C., Xiaojun H., Huanying Z., Jicheng H., et al. J. Med. Virol. 2004. 73, № 3, с. 332–337. Англ.

1-2.ХБ.316.Генетический анализ вируса Конго-Крымской геморрагической лихорадки в Иране. Genetic analysis of Crimean-Сongo hemorrhagic fever virus in Iran. Chinikar S., Persson S.M., Johansson M., Bladh L., Goya M., et al. J. Med. Virol. 2004. 73, № 3, с. 404–411. Англ.

1-2.ХБ.317.Активация лимфоцитов и гепато-клеточная инфильтрация у иммунокомпетентных мышей, инфицированных вирусом денге. Lymphocyte activation and hepatic cellular infiltration in immunocompetent mice infected by dengue virus. Chen H.C., Lai S.Y., Sung J.M., Lee S.H., Lin Y.C., et al. J. Med. Virol. 2004. 73, № 3, с. 419–431. Англ.

1-2.ХБ.318.Персистентная инфекция коронавируса SARS в клетках толстой кишки in vitro. Persistent infection of SARS coronavirus in colonic cells in vitro. Chan P.K., To K.F., Lo A.W., Cheung J.L., Chu I., Au F.W., et al. J. Med. Virol. 2004. 74, № 1, с. 1–7. Англ.

1-2.ХБ.319.Появление и непрерывная циркуляция штаммов вируса денге-2 (генотип IV) в северной части Индии. Emergence and continued circulation of dengue-2 (genotype IV) virus strains in northern India. Dash P.K., Parida M.M., Saxena P., Kumar M., Rai A., Pasha S.T., Jana A.M. J. Med. Virol. 2004. 74, № 2, с. 314–322. Англ.

1-2.ХБ.320.Интернализация вируса денге модулируется клеточным циклом в клетках HepG2 и не модулируется в клетках Vero. Internalization of the dengue virus is cell cycle modulated in HepG2, but not Vero cells. Phoolcharoen W., Smith D.R. J. Med. Virol. 2004. 74, № 3, с. 434–441. Англ.

1-2.ХБ.321.Оценка основанного на пептиде иммуноферментного анализа на IgG-антитела к коронавирусу SARS. Evaluation of a peptide-based enzyme immunoassay for anti-SARS coronavirus IgG antibody. Chan P.K., To W.K., Liu E.Y., Ng T.K., Tam J.S., Sung J.J., Lacroix J.M., Houde M. J. Med. Virol. 2004. 74, № 4, с. 517–520. Англ.

1-2.ХБ.322.Изучение вируса клещевого энцефалита из Эстонии. Characterization of tick-borne encephalitis virus from Estonia. Golovljova I., Vene S., Sjolander K.B., Vasilenko V., Plyusnin A., Lundkvist A. J. Med. Virol. 2004. 74, № 4, с. 580–588. Англ.

1-2.ХБ.323.Экспрессированные E. coli рекомбинантные норовирусные капсидные белки сохраняют аутентичную антигенность и способность связываться с рецептором. E. coli-expressed recombinant norovirus capsid proteins maintain authentic antigenicity and receptor binding capability. Tan M., Zhong W., Song D., Thornton S., Liang X. J. Med. Virol. 2004. 74, № 4, с. 641–649. Англ.

1-2.ХБ.324.Неэффективное расщепление сигналазой вызывает эффективное включение нуклеокапсида в почкующиеся флавивирусные мембраны. Inefficient signalase cleavage promotes efficient nucleocapsid incorporation into budding flavivirus membranes. Lobigs M., Lee E. J. Virol. 2004. 78, № 1, с. 178–186. Англ.

1-2.ХБ.325.Доказательство важной каталитической роли протеинкиназы F10 в морфогенезе вируса вакцины. Evidence for an essential catalytic role of the F10 protein kinase in vaccinia virus morphogenesis. Szajner P., Weisberg A.S., Moss B. J. Virol. 2004. 78, № 1, с. 257–265. Англ.

1-2.ХБ.326.Физическое и функциональное взаимодействия между протеинкиназой F10 вируса вакцины и белками сборки вирионов А30 и G7. Physical and functional interactions between vaccinia virus F10 protein kinase and virion assembly proteins A30 and G7. Szajner P., Weisberg A.S., Moss B. J. Virol. 2004. 78, № 1, с. 266–274. Англ.

1-2.ХБ.327.Индуцируемая тетрациклином упаковывающая клеточная линия для продуцирования флавивирусных репликонных частиц. Tetracycline-inducible packaging cell line for production of flavivirus replicon particles. Harvey T.J., Lin W.J., Wang X.J., Linedale R., Jacobs M., Davidson A., Le T.T., Anraku I., Suhrbier A., Shi P.Y., Khromykh A.A. J. Virol. 2004. 78, № 1, с. 531–538. Англ.

1-2.ХБ.328.Отбор функциональных 5‘цис-действующих элементов, вызывающих эффективную репликацию генома вируса Синдбис. Selection of functional 5‘cis-acting elements promoting efficient Sindbis virus genome replication. Gorchakov R., Hardy R., Rice C.M., Frolov I. J. Virol. 2004. 78, № 1, с. 61–75. Англ.

1-2.ХБ.329.Накопление 3‘-концевого геномного фрагмента в клетках млекопитающего и комара, инфицированных вирусом японского энцефалита. Accumulation of a 3‘-terminal genome fragment in Japanese encephalitis virus-infected mammalian and mosquito cells. Lin K.C., Chang H.L., Chang R.Y. J. Virol. 2004. 78, № 10, с. 5133–5138. Англ.

1-2.ХБ.330.Анализ N-связанного гликозилирования гликопротеидов вируса Хантаан и роль боковых олигосахаридных цепей в скручивании белков и их внутриклеточном передвижении. Analysis of N-linked glycosylation of Hantaan virus glycoproteins and the role of oligosaccharide side chains in protein folding and intracellular trafficking. Shi X., Elliott R.M. J. Virol. 2004. 78, № 10, с. 5414–5422. Англ.

1-2.ХБ.331.Свойства компетентных по репликации векторных вирусов везикулярного стоматита, экспрессирующих гликопротеиды филовирусов и аренавирусов. Properties of replication-competent vesicular stomatitis virus vectors expressing glycoproteins of filoviruses and arenaviruses. Garbutt M., Liebscher R., Wahl-Jensen V., Jones S., Moller P., Wagner R., Volchkov V., Klenk H.D., Feldmann H., Stroher U. J. Virol. 2004. 78, № 10, с. 5458–5465. Англ.

1-2.ХБ.332.Персистентная инфекция вируса Эбола в условиях частичного иммунитета. Persistent infection with Ebola virus under conditions of partial immunity. Gupta M., Mahanty S., Greer P., Towner J.S., Shieh W.J., Zaki S.R., Ahmed R., Rollin P.E. J. Virol. 2004. 78, № 2, с. 958–967. Англ.

1-2.ХБ.333.Изучение ассоциированной с мембраной индуцируемой низким рН тримерной формы белка слияния Е класса II вируса клещевого энцефалита и ее кристаллизация. Characterization of a membrane-associated trimeric low-pH-induced form of the class III viral fusion protein E from tick-borne encephalitis virus and its crystallization. Stiasny K., Bressanelli S., Lepault J., Rey F.A., Heinz F.X. J. Virol. 2004. 78, № 6, с. 3178–3183. Англ.

1-2.ХБ.334.Многоэтапная регуляция включения в мембрану пептида слияния вируса леса Семлики. Multistep regulation of membrane insertion of the fusion peptide of Semliki Forest virus. Gibbons D.L., Ahn A., Liao M., Hammar L., Cheng R.H., Kielian M. J. Virol. 2004. 78, № 7, с. 3312–3318. Англ.

1-2.ХБ.335.Очистка и кристаллизация выявляют два типа взаимодействий сливного белкового гомотримера вируса леса Семлики. Purification and crystallization reveal two types of interactions of the fusion protein homotrimer of Semliki Forest virus. Gibbons D.L., Reilly B., Ahn A., Vaney M.C., Vigouroux A., Rey F.A., Kielian M. J. Virol. 2004. 78, № 7, с. 3514–3523. Англ.

1-2.ХБ.336.Продукт гена K1L вируса вакцины подавляет активацию NF-kappaB хозяина, предупреждая разрушение IkappaВаlpha. The vaccinia virus K1L gene product inhibits host NF-kappaB activation by preventing IkappaBalpha degradation. Shisler J.L., Jin X.L. J. Virol. 2004. 78, № 7, с. 3553–3560. Англ.

1-2.ХБ.337.Изучение антивирусной и иммунорегуляторной функций рецепторов фактора некроза опухоли при хронической инфекции вируса лимфоцитарного хориоменингита. Dissection of antiviral and immune regulatory functions of tumor necrosis factor receptors in a chronic lymphocytic choriomeningitis virus infection. Suresh M., Gao X., Fischer C., Miller N.E., Tewari K. J. Virol. 2004. 78, № 8, с. 3906–3918. Англ.

1-2.ХБ.338.Человеческий белок МхА подавляет репликацию вируса Конго-Крымской геморрагической лихорадки. Human MxA protein inhibits the replication of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus. Andersson I., Bladh L., Mousavi-Jazi M., Magnusson K.E., Lundkvist A., Haller O., Mirazimi A. J. Virol. 2004. 78, № 8, с. 4323–4329. Англ.

1-2.ХБ.339.Идентификация Fab-фрагментов шимпанзе посредством клонирования и продуцирования гуманизированных IgG1-антител полной длины, с высокой эффективностью нейтрализующих вирус денге типа 4. Identification of chimpanzee Fab fragments by repertoire cloning and production of a full-length humanized immunoglobulin G1 antibody that is highly efficient for neutralization of dengue type 4 virus. Men R., Yamashiro T., Goncalves A.P., Wernly C., Schofield D.J., Emerson S.U., Purcell R.H., Lai C.J. J. Virol. 2004. 78, № 9, с. 4665–4674. Англ.

1-2.ХБ.340.Область внешней петли домена III оболочечного белка вируса денге типа 2 участвует в серотип-специфическом связывании с клетками комара, но не млекопитающего. An external loop region of domain III of dengue virus type 2 envelope protein is involved in serotype-specific binding to mosquito but not mammalian cells. Hung J.J., Hsieh M.T., Yоung M.J., Kao C.L., King C.C., Chang W. J. Virol. 2004. 78, № 1, с. 378–388. Англ.

1-2.ХБ.341.Структуры адгезинов и инвазинов патогенных бактерий. Adhesins and invasins of pathogenic bacteria: a structural view. Niemann H.H., Schubert W.D., Heinz D.W. Microb. and Infect. 2004. 6, № 1, с. 101–112. Англ.

1-2.ХБ.342.Взаимодействие между Brucella abortus и клеточным прионным белком в микродоменах липидного плота. Interaction between Brucella abortus and cellular prion protein in lipid raft microdomains. Watarai M. Microb. and Infect. 2004. 6, № 1, с. 93–100. Англ.

1-2.ХБ.343.Доказательства на молекулярном уровне наличия нового варианта бруцелл у северных китов. Molecular evidence of new variant Brucella in North Pacific common minke whales. Ohishi K., Takishita K., Kawato M., Zenitani R., Bando T., et al. Microb. and Infect. 2004. 6, № 13, с. 1199–1204. Англ.

1-2.ХБ.344.Реакция перитонеальных макрофагов на производные от Yersinia enterocolitica O:3 в виде образования альфа-ФНО, Н₂O₂ и NO. TNF-alpha, Н₂O₂ and NO response of peritoneal macrophages to Yersinia enterocolitica O:3 derivatives. Carlos I.Z., Silva Monnazzi L.G., Falcao D.P., Machado de Medeiros B.M. Microb. and Infect. 2004. 6, № 2, с. 207–212. Англ.

1-2.ХБ.345.Липидные плоты в активации лимфоцитов. Lipid rafts in lymphocyte activation. Pizzo P., Viola A. Microb. and Infect. 2004. 6, № 7, с. 686–692. Англ.

1-2.ХБ.346.Микродомены липидных плотов опосредуют зависимую от рецептора-уборщика класса А инфекцию Brucella abortus. Lipid raft microdomains mediate class A scavenger receptor-dependent infection of Brucella abortus. Kim S., Watarai M., Suzuki H., Makino S., Kodama T., Shirahata T. Microb. Pathog. 2004. 37, № 1, с. 11–19. Англ.

1-2.ХБ.347.Система проверки с улавливанием N-окончания для выделения генов Brucella abortus, кодирующих поверхностные и выделяемые белки. N-terminal-capturing screening system for the isolation of Brucella abortus genes encoding surface exposed and secreted proteins. Marchesini M.I., Ugalde J.E., Czibener C., Comerci D.J., Ugalde R.A. Microb. Pathog. 2004. 37, № 2, с. 95–105. Англ.

1-2.ХБ.348.Компонент NheA негемолитического энтеротоксина Bacillus cereus вырабатывается Bacillus anthracis, но не требуется для вирулентности. The NheA component of the non-hemolytic enterotoxin of Bacillus cereus is produced by Bacillus anthracis but is not required for virulence. Mendelson I., Tobery S., Scorpio A., Bozue J., Shafferman A., Friedlander A.M. Microb. Pathog. 2004. 37, № 3, с. 149–154. Англ.

1-2.ХБ.349.Очистка бактериальной иРНК методом магнитного улавливания-гибридизации. Bacterial mRNA purification by magnetic capture-hybridization method. Pang X., Zhou D., Song Y., Pei D., Wang J., Guo Z., Yang R. Microbiol. and Immunol. 2004. 48, № 2, с. 91–96. Англ.

1-2.ХБ.350.Toll-подобный рецептор 3. Связь между toll-подобным рецептором, интерфероном и вирусами. Toll-like receptor 3: a link between toll-like receptor, interferon and viruses. Matsumoto M., Funami K., Oshiumi H., Seya T. Microbiol. and Immunol. 2004. 48, № 3, с. 147–154. Англ.

1-2.ХБ.351.Получение виросом, покрытых гликопротеидом вируса везикулярного стоматита, в качестве эффективного средства переноса генов в клетки млекопитающего. Preparation of virosomes coated with the vesicular stomatitis virus glycoprotein as efficient gene transfer vehicles for animal cells. Shoji J., Tanihara Y., Uchiyama T., Kawai A. Microbiol. and Immunol. 2004. 48, № 3, с. 163–174. Англ.

1-2.ХБ.352.Вирулентность шероховатых и гладких штаммов Vibrio cholerae 01. Virulence properties of rough and smooth strains of Vibrio cholerae 01. Islam M.S., Ahsan S., Khan S.I., Ahmed Q.S., Rashid M.H., Islam K.M., Sack R.B. Microbiol. and Immunol. 2004. 48, № 4, с. 229–235. Англ.

1-2.ХБ.353.Вирус Западного Нила. West Nile virus. Brandt A.L., Matryak N., Westhoff J., Kang C. Milit. Med. 2004. 169, № 4, с. 201–204. Англ.

1-2.ХБ.354.Идентификация Francisella tularensis с использованием флуоресцентной полимеразной цепной реакции в реальном времени. Identification of Francisella tularensis using real-time fluorescence polymerase chain reaction. McAvin J.C., et al. Milit. Med. 2004. 169, № 4, с. 330–333. Англ.

1-2.ХБ.355.Проблемы применения метода микропорядков ДНК в военно-медицинских исследованиях. Applications and challenges of DNA microarray technology in military medical research. Draghici Sorin, Chen Dechang, Reifman Jaques. Milit. Med. 2004. 169, № 8, с. 654–659. Англ.

1-2.ХБ.356.Экспрессирующая конструкция для наработки в Escherichia coli нейротоксина II из яда кобры Naja oxiana в виде гибрида с тиоредоксином. Люкманова Е.Н., Шульга А.А., Арсеньева Д.А., Плужников К.А., Долгих Д.А., Арсеньев А.С., Кирпичников М.П. Биоорган. химия. 2004. 30, № 1, с. 30–40. Рус.; рез. англ.

1-2.ХБ.357.Токсины. Toxins. Пат. 6706860 США, МПК⁷ A 01 N 25/00, A 01 N 37/18. Bayer BioScience N. V., Boets Annemie, Arnaut Greta, Vna Rie Jeroen, Damme Nicole. № 09/858525; Заявл. 17.05.2001; Опубл. 16.03.2004; НПК 530/350. Англ.

Наверх
<<Назад	<<Содержание>>	Далее>>